细菌感染的持续快速发展已成为全球健康面临的最严重的挑战之一。抗生素是治疗细菌感染最有效、最常用的方法,但过度使用或长期使用单一的抗生素被视为导致细菌耐药性发展的主要原因。因此,迫切需要开发一种新型治疗手段来应对细菌引起的感染性疾病。随着纳米技术的快速发展,纳米酶在细菌感染治疗领域引起了研究人员的广泛关注。然而,单一纳米酶的抗菌效果有限且存在对细菌靶向性不足的缺点,严重限制了其在抗菌领域的应用。同时,组织细菌感染的误诊和确诊过晚等现象不断增加。因此,开发具有主动靶向的基于纳米酶的协同抗菌、成像策略成为目前有前景的应用手段。本论文针对改善单一纳米酶的抗菌性能,提出了多模式协同抗菌及兼具伤口荧光成像功能的纳米治疗策略。在第二章中构建了一个具有实时监测、高效抗菌活性和优异伤口愈合能力的LL-37@MIL-101-Van多功能纳米酶。该纳米酶以MIL-101为核心,通过抗菌肽LL-37、抗生素Van的修饰,形成兼具协同治疗和伤口荧光成像于一体的多功能纳米酶。通过SEM、TEM、XRD、XPS、FI-IR等表征手段确定多功能纳米酶的成功合成,并通过ESR、TMB等验证该纳米酶在微酸环境下可有效催化·OH的产生。通过体外和体内的抗菌实验结果表明,LL-37@MIL-101-Van纳米酶可导致细菌膜selleck HPLC的破裂及内容物的泄露等方式导致细菌的杀灭。同时通过溶血实验、体内外毒性评价表明LL-37@MIL-101-Van纳米酶具有良好的生物相容性。进一步通过活体动物成像实验证明MPA标记的LL-37@MIL-101-Van纳米酶可成功靶向递送至伤口细菌感染部位,其伤口组织/正常组织的荧光摄取比率高达4.78,表明其可用于监测细菌感染的治疗进展和有效促进伤口细菌感染的愈合。具有优异的过氧化物酶活性的LL-37@MIL-101-Van纳米酶可将·OH与LL-37、Van发挥高效协同抗菌作用,在一定程度上减少抗生素的使用,从而延缓细菌耐药性的发展。该多功能纳米酶治疗策略可为评估伤口愈合情况、协同抗菌治疗和减少抗生素的耐药性发展提供新方法。在第三章中通过溶剂热合成法、原位还原法构建了LL-37-HA-Au-Pt@PCN-224多功能纳米酶,可用于多模式协同抗菌治疗及伤口细菌感染的荧光成像。该纳米酶由具有过氧化物酶活性的Au NPs、具有过氧化氢酶活性的Pt NPs、具有光动力治疗效果的PCN-224构成,且外层由HA及Cattle breeding geneticsLL-37的修饰。通过SEM、TEM、Mapping、XPS等表征手段验证超小Au/Pt NPs约为2～3 nm均匀分布于PCN-224纳米粒子上。通过TMB、MB、DPBF等验证该纳米酶可将低浓度的H_2O_2催化为O_2及·OH,生成的O_2进一步被PCN-224催化为~1O_2。通过细菌平皿涂布、细菌活死染色、细菌形态观察等实验表明该纳米酶具有较好的协同抗菌效果。活体动物成像实验结果表明,通过近红外荧光染料MPA标记的LL-37-HA-Au-Pt@PCN-224可有效用于伤口细菌感染的荧光成像和实时监测伤口愈合过程。该治疗策略形成抗菌肽、过氧化物纳米酶、过氧化氢纳米酶、光动力治疗的多者协同抗菌治疗。该多功能纳米酶是具有实时伤口成像、监测伤口愈Metabolism抑制剂合过程、生物相容性高的纳米治疗策略。综合上述,本文通过抗菌肽LL-37功能化MIL-101、Au-Pt@PCN-224构建具有伤口细菌感染成像和多模式协同抗菌治疗的纳米酶策略。通过表征、催化活性研究、体内外抗菌实验、体内外生物相容性实验、活体动物成像实验证明该纳米酶具有良好的生物相容性、优异的体内外协同抗菌性能、突出的伤口荧光成像能力。